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Bonjour les ami(e)s,

 

J'espère que vous allez tous bien.

Pour changer des insectes, voici la pointe d'un stylo bille bleu d'une marque très connue, prise avec mon objectif Mitutoyo 5x sur banc macro :

stylo_bille_5x.thumb.jpg.973c472db0326394d8b5ddc042c6074d.jpg

Amitiés,

FRanck

Modifié par fdudu
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Bonsoir les ami(e)s

J'ai tenté une coupe du pistil du pélargonium ,on voit le pollen qui se pose sur les stigmates ceux ci  sont sur le pistil , cela dit je ne suis pas satisfait

de mon image,  on voit plus de détails qu'avec l'ancien microscope  mais   la netteté est insuffisante et les ombres du fond sont des stigmates hors de portées 

L'objectif est de  60X   je pense ,  le manque de piqué semble l'attester ( il faudra que je m'équipe pour stacker)

Je vais encore faire une autre tentative avant les vacances de mes petits enfants qui seront chez moi une semaine à partir de demain 

 

 

 

Modifié par charles43
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Bonjour les ami(e)s, bonjour cher Charles,

 

Il y a 19 heures, charles43 a dit :

( il faudra que je m'équipe pour stacker)

Impérativement en effet ! sinon tu n'as rien à acheter pour faire du focus stacking puisque tu as déjà ton microscope. Il te suffit d'avoir un logiciel d'empilement pour le focus stacking et un logiciel d'édition d'image pour améliorer le résultat final si besoin (renforcement du contraste et de la netteté en général).

Comme logiciel d'empilement gratuit, tu as le logiciel Picolay qui est pas mal et surtout très bien documenté avec, entre autre, des exercices pratiques :

https://www.picolay.de/
 

En bref, pour stacker :

1 - tu prends les prises de vues à différentes mises au point en partant du point net le plus proche (avant plan)  et en finissant au point net le plus éloigné (arrière plan),

(je pense que pour ton exemple de la coupe du pistil du pélargonium, il te faudrait prendre environ une vingtaines de photos à différentes mises au point en prenant soins "d'avancer" très lentement la mise au point entre chacune des photos vu le grossissement de 60x ;  plus tu agrandis, plus tu avances ta map lentement)

2 - ensuite tu empiles les photos avec un logiciel d'empilement comme Picolay,

(dans un premier temps, commence avec les paramètres d'empilement par défaut, ensuite tu as toutes les explications des paramètres d'empilement et les exercices ici:  https://www.picolay.de/tutorials.htm )
3 - une fois l'image finale stackée, tu peux l'améliorée à l'aide du logiciel d'édition d'images gratuit GIMP (comme Photoshop mais gratuit) en, par exemple, renforçant le contraste et en améliorant la netteté de l'image,

https://www.gimp.org/

La documentation générale : https://docs.gimp.org/

Le chapitre 10 de cette documentation qui explique comment améliorer les images : https://docs.gimp.org/2.10/fr/gimp-imaging-photos.html
Le chapitre pour améliorer le contrastehttps://docs.gimp.org/2.10/fr/gimp-tool-brightness-contrast.html

Le chapitre pour renforcer la nettetéhttps://docs.gimp.org/2.10/fr/gimp-filter-unsharp-mask.html
 

Pour exemple, voici ton image de la coupe du pistil du pélargonium dans laquelle j'ai renforcé le contraste et la netteté, peut-être un peu exagérément, mais c'est pour l'exemple (les corrections "colorimétriques" apportées à une photo sont toujours subjectives)  :

SUNP0058-1024x768cor.jpg.4bc2e80a9c5bcda38ce0b3a053c87fc2.jpg
Il est évident, comme tu le dis, que la pratique du stacking est nécessaire pour que tes photos soient nettes sur tous les plans surtout maintenant avec ton superbe nouveau microscope (il est bien net je trouve 👍) .

 

Amitiés,

FRanck

Modifié par fdudu
fotes d'ortograf et il en reste, c'est sûr ;)
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Bonjour les ami(e)s, Je pense que je vais utiliser picolay j'ai regardé la  documentation cela semble top ,pour le télécharger je vais  attendre 

le départ des petits enfants c'est difficile avec eux .

Il est possible avec mon microscope d'utiliser des filtres polarisants pour les objectifs 4X et 10X pour les autres il n'y a plus 

de places  .......

J'ai aussi un condenser pour le réglage des lumières 

J'ai fait une petite vidéo d'un cheveu (blanc) en lumière polarisée l'objectif est de 4X  avec un changement de position du filtre  

Merci encore Franck pour tes infos  et les réglages que tu as fait pour l'améliorer l'image de la coupe du pistil  c'est beaucoup mieux ainsi 

A bientôt Charles 

 

I

 

Modifié par charles43
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  • 2 semaines plus tard...
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Bonjour les ami(e)s

Voici une vidéo d'une aile de petit blanc du choux, je fais des essais d'éclairages comme je n'ai pas de lumière qui va du haut en bas ,j'ai utilisé ma lampe de poche il faut que je trouve un éclairage fiable l'objectif est de 4X .

Dans la vidéo j'allume ma lampe par intermittence , ce microscope ne permet qu'un éclairage par le bas 

je trouverai bien une solution 

Pour Picolay je regarde actuellement les indications ,j'ai la fiche pour mettre directement les images sur l'ordinateur 

il faut que je teste tout cela Franck . 

A bientôt 

 

Modifié par charles43
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Bonjour Charles,

 

Le 01/11/2024 à 11:28, charles43 a dit :

il faut que je trouve un éclairage fiable

Voici quelques-unes des configurations d'éclairage par réflexion que j'utilise pour le microscope biologique.
 

1 - Avec deux bras lumineux macro JJC collés sur des pinces avec des balles de ping-pong comme diffuseur :
01_jjc_ping_pong.thumb.jpg.5fe9308447347d4a5d4342adaf4bb49a.jpg
 

2 - Avec deux anneaux LED :
02_led_anneau.thumb.jpg.c3af7b69a55d29ce92dea5b26d750e4c.jpg
 

3 - Avec les led JJC Macro Arm Light sans balle de ping pong  et deux anneaux LED et un yaourt comme diffuseur :
03_jjc_led_anneauyaourt.thumb.jpg.a75e03a845b0d7b50966f8440968bd08.jpg


4 - Avec deux leds et une couche quadruple d'épaisseur de papier calque diffuseur entre les leds et l'objet :
04_led_calque.thumb.jpg.f1f051b45c581e9e65ea38f16b873836.jpg

 

5 - Avec deux leds avec des balles de ping-pong comme diffuseur :
04_led_ping_pong.thumb.jpg.ad0ae24add0c60c82518437f03e1ab2d.jpg


Désignation du matériel d'éclairage :
- Double leds  (20 euros environ) : JJC Macro Arm Light, 5600K Flexible Makro-LED-Lamp
- Anneau led à pince (13 euros environ) : Jigerjs Clamp-on Reading Lamps
- Les deux leds à pince (20 euros environ) : Tomlov - Microscope col de cygne, lumières auxiliaires
Tu peux rechercher les noms des articles en italique sur internet.
 

Je pense qu'il n'y a pas de règle vraiment bien définie pour l'éclairage par réflexion (cela dépend surtout de l'objet et de ses caractéristiques) au contraire de l'éclairage par transmission, qui lui, à des règles à bien respecter comme tu le sais certainement (réglages des diaphragmes de champ et du condenseur, hauteur du condenseur, centrage du point lumineux, etc  ).
Mais la mise en place d'un diffuseur est très souvent nécessaire afin d'éviter les flashs lumineux, les zones les plus lumineuses de l'objet trop éclairées (toutes blanches ou sans détails) ou trop contrastées (image surexposée ou trop dure). La diffusion avec du papier calque, un pot de yaourt, etc., permet un éclairage plus homogène et plus "doux".

Cordialement,
Franck

Modifié par fdudu
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Bonsoir les ami(e)s ,

Merci Franck, ces photos vont me permettre de résoudre mon problème pour l'éclairage , tu as trouvé des systèmes astucieux , cela me donne une idée de ce que je dois faire 

Pour stacker mon fils va me mettre les programmes qui me manquent pour télécharger Picolay et avoir une connexion direct avec l'ordinateur 

et le microscope sans passer par le LCD de celui _ci  si c'est possible .

Merci encore pour tes informations à bientôt Charles .

 

 

 

Modifié par charles43
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Bonjour les ami(e)s,

En attendant mes doubles leds j'ai fait un cliché avec ma  lampe de poche une aile de petit blanc du chou( non stackée) l'objectif est de 4X

Cette aile sera refaite plus tard avec Picolay (bon sujet pour s'entrainer )

Il est recommandé dans les notices en français  de ne pas télécharger Picolay directement sur Windows , mais dans un sous  programme que mon fils doit m'installer normalement ce sera fait ces jours ci si tout va bien ....

Voila Franck j'espère avoir tout le plus vite possible , à bientôt 

Modifié par charles43
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Bonjour les ami(e)s,

Je viens de recevoir mes doubles leds Franck , il me manque plus que Picolay mon fils passera peut être ce week end pour l'installer .

En attendant je vais faire un peu de microbiologie j'ai un vase avec du colza de la terrasse, on verra ce que cela donne  .

A bientôt Charles 

 

Modifié par charles43
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Bonjour les ami(e)s

Première tentative avec mon nouveau microscope en microbiologie ,il y a des rotifères très petits qui semblent se balader à la limite de détection 

à ce grossissement ,l'objectif est de 40X .                                                                                                                                                                                                              Les plus gros micro organismes on la taille d'un   grain du pollen  je ne les identifies pas encore .

Pour que ce soit plus net je dois mettre une plaque en verre fine sur la goutte d'eau .

En ce qui concerne Picolay mon fils n'est pas passé ce week end  Franck, il m'as dit que ce serai pour le prochain .

J'ai testé les doubles leds cela est prometteur pour des images Stackées 

A bientôt Charles 

 

 

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Merci pour le partage !

Je me souviens avoir plus souvent observé des paramécies, dans les gouttes d'eau croupie du lac du bois de Boulogne...et une seule fois une rotifere, reconnue à son mode de déplacement...

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Il y a 3 heures, charles43 a dit :

Première tentative avec mon nouveau microscope en microbiologie

Bonjours Charles,

Ça promet de belles vidéos et photos 👍 . . .

Amicalement,

FRanck

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Bonsoir les ami(e)s ,

Voici une vidéo ou les  flagelles ont eu le temps de se développer dans l'eau du colza , elles sont à peine visible dans le bas à gauche j'ai utilisé l'objectif 40X  au début c'est légèrement flou mais j'ai corrigé en cours de route .....

Cette fois j'ai mis une plaque de verre sur la goutte d'eau ce qui laisse des traces visibles il faudra la nettoyer convenablement pour la prochaine fois .

Pour voir mieux les flagelles il y aurai fallu l'objectif 60X pour l'instant j'apprend, des gros micro organismes qui défilent je n' ai  aucune idées de leurs appartenances  .

En ce qui concerne Picolay mon fils n'as pas encore téléchargé le programme car la version Windows 10 de mon ordinateur va être supprimée 

Tu vois Franck il va falloir transférer mes programmes , comme je ne connaît pas grand chose en informatique cela va être chaud .......

En attendant je vais continuer en microbiologie ,à bientôt Charles 

 

Modifié par charles43
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Bonjour à tous, bonjour mon cher Charles,

Il y a 17 heures, charles43 a dit :

la version Windows 10 de mon ordinateur va être supprimée 

Juste une petite question : quelle est la raison pour laquelle tu dois supprimer Windows 10 de ton ordinateur ?

Amitiés,

Franck

Posté

Bonsoir les ami(e)s ,

j'ai reçu une série d'affichages qui me disaient que Windows 10 allait être supprimé pour 2025 , j'ai contacté mon fils qui ma dit , de toute façon 

ton ordinateur est trop vieux pour recevoir Windows 11 .

c'est vrai mon pc à plus de 10ANS mais je vais m'informer je suis dubitatif .

En ce qui concerne le microscope j'ai fais une dizaine de vidéos  toujours avec l'eau du colza  avec objectif 40X et 60X .

L'objectif 60X  Franck semble mieux convenir pour les micro organismes que l'on voit 

Je vais faire un tri en je posterai la meilleur , une surprise  amibes et protozoaires semblent absents avec le colza 

Cela m'intrigue .

A bientôt amicalement Charles 

 

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Bonjour Charles,

Je te conseil de rester en Windows 10 car la version 11 n’apportera rien pour nous, que se soit en astronomie ou microscopie, et comme le dit ton fils, ton ordi n’ai pas compatible, tout comme mon ordi aussi (pour info, mon ordi est un Intel core i7 8700k avec 32 Go de ram et des ssd nvme et ca me va tres bien au niveau puissance de calcul,  mémoire ram et rapidité des ssd nvme)

Ne tient pas compte du message qui dit que Windows 10 ne sera plus supporté en 2025, on s'en moque.

A aujourd'hui, tous les logiciels que l’on utilise fonctionnent très bien en Windows 10.

En ce qui concerne Picolay, il fonctionne très bien avec Windows 10.

Amitié

Franck

Modifié par fdudu
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Bonsoir les ami(e)s ,

Je pensais mettre une vidéo avec l'objectif 60X  mais il s'est avéré que la prise que j'avais faite avec l'objectif 40X  était pour moi la meilleur 

au niveau piqué et événements .

On voit bien l'intérieur des micro organismes verts (les plus gros) il y a aussi des flagelles très nombreuses ainsi que des rotifères. 

j'ai gardé les 2 vidéos avec l'objectif 60X au cas ou je n'arriverai pas à faire mieux .

Pour Windows 10 Franck je suis tout à fait d'accord avec toi , je vais le garder .

Bonne soirée à toutes et tous , à bientôt Charles 

Modifié par charles43
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Rebonsoir , 

Il y avait une différence de qualité entre la vidéo sur mon ordinateur et celle publiées via YouTube .

Mon fils ma dit que le transfère mettait la vidéo sur la moins bonne qualité , j 'ai pris note de ce qu'il m'as dit, effectivement il y a un réglage 

sur YouTube en bas de la vidéo , je l'ai mise sur auto 720p 6O  et la vidéo est meilleur chez moi sur web ASTRO 

Il est possible que cette amélioration n'existe que chez moi .

 

 

Posté

la météo mettant l'astronomie en suspend, retour à l'infiniment petit

 

eau de forêt + mousse

microscope : Bresser LCD 10x et 40x

gants plastique

 

un nématode :

 

 

 

un truc ??? assez classique, mais je n'ai pas son petit nom

 

 

 

 

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Bonsoir les ami(e)s 

Chouettes toutes ces photos  de bestioles microscopiques prisent dans la mousse du toit et au bois bravo à vous deux .

Pres de chez moi il y a des étangs hélas il y a régulièrement du botulisme et aussi la grippe aviaire cela ne donne pas envie de les utiliser pour faire

des prélèvements .

Pour ma dernière vidéo elle est beaucoup trop  sombre , j'ai fais sur mon ordinateur une vignette standard pour évaluer la luminosité  , pour la dernière je ne l'avais pas encore .

Les micro organismes que je présente sont très petit avec l'objectif 10X je ne vois rien du tout à peine des petits traits 

Pour vérifier j'ai fait une prise avec le vieux microscope aussi à l'objectif 10X et c'est la même chose des petits traits fixes .

Donc    le colza en mono n'est pas l'idéal pour avoir de plus gros micro organismes à moins d'avoir un objectif 1000 X que je n'ai pas .

J'ai renouvelé la culture je vais tenter avec l'objectif 60X  toujours avec le colza on verra bien ce que cela donne .

J'ai préparé une culture avec la lave de l'Etna , j'ai une vidéo de l'ancien microscope, j'avais obtenu avec lui des protozoaires .

Il faut que je la retrouve 

A bientôt à toutes et à tous 

 

l

Modifié par charles43
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rRe bonsoir 

J'ai retrouvé la vidéo lave de l'Etna faite avec le vieux microscope l'objectif est de 10X , je retente cette expérience pour  le nouveau micro  pour voir plus de détails si possible 

 

Modifié par charles43
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Il y a 1 heure, charles43 a dit :

J'ai retrouvé la vidéo lave de l'Etna faite avec le vieux microscope l'objectif est de 10X , je retente cette expérience pour  le nouveau micro  pour voir plus de détails si possible 

 

"la vie trouve toujours son chemin"  Jeff Golblum

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Bonjour les ami(e)s,

 

J'espère que vous allez tous bien.

Je vous partage une zoropsis spinamana zoropse à pattes épineuses prise sur banc macro avec les objectifs Mitutoyo M Plan Apo 5x et 10x avec un objectif de tube Sigma 105 mm macro, le tout sur un Canon 1200D.

 

Prises de vue :

pdv1.thumb.jpg.c5522912192bde9862f410fe0d393676.jpg
 

pdv2.jpg.b7e27f5fae1b419d30c3337a51599b69.jpg


Avec l'objectif Mitutoyo 5x :

araignee_5x_mittu-sigma.thumb.jpg.fb00ba0ee8f9f828648c8dbf4809a468.jpg

Image stackée à partir de 177 images dans HeliconFocus avec la méthode C et lissage à 1 - objectif de tube Sigma ouvert à f2.8 et réglé sur l'infini - temps de pose de 1/30 de seconde à 100 ISO


Avec l'objectif Mitutoyo 10x :

araignee_10x_mittu-sigma.thumb.jpg.918bca1ecd73301fc6704c06f5aa2489.jpg

Image stackée à partir de 189 images dans HeliconFocus avec la méthode C et lissage à 1 - objectif de tube Sigma ouvert à f2.8, temps de pose de 1/20 de seconde à 100 ISO

Je précise que l'objectif de tube utilisé est un Sigma de 105 mm de focale et que les objectifs Mitutoyo ont été conçus pour être utilisés avec un objectif de tube d'une distance focale de 200 mm. Par conséquent les taux de grandissement de 5x et 10x ne sont effectifs qu'avec cette focale de 200 mm.
Il faut donc diviser par à peu près 2 les taux de grandissement. Mais vu que l'appareil photo utilisé est un APS-C Canon 1200D, il faut également, ce coup-ci, multiplier par le "facteur de recadrage" qui est de 1,6 x pour les Canon.
Pour le 5x, le taux de grandissement est donc de 4x (5/2 x 1.6) - Pour le 10x, le taux de grandissement est donc de 8x (10/2 x 1.6)

Amitiés,
FRanck

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